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CYP450酶代谢表型研究原理及实验方法 2021-12-24

CYP450酶代谢表型研究原理及实验方法 1 概述 1.1 药物代谢研究简介药物代谢研究是创新药物研发的重要内容，它不仅决定了创新药物制剂研发的成败，而且与创新药物研发的速度和质量有密切关系。因而，药物代谢研究在新药研发工程中具有不可或缺的重要作用，研究药物代谢对于了解药物在体内的变化过程至关重要。药物代谢研究的方法主要分为体内和体外两种。体内代谢法因药物在生物体内的分布较广，加上代谢转化的器官和酶系的多样性，使药物及其代谢产物在体内的浓度比较低，代谢产物的检测具有一定的困难。体外代谢法在短时间内可以得到大量的代谢产物，且代谢条件可控，代谢体系比较“干净”，代谢物易于分离、提取，有利于代谢途径研究及代谢产物结果的确定等，因而，体外代谢法具有突出的优越性。由于肝脏是药物代谢的主要场所，体外代谢模型多以肝脏为基础。目前，研究体外代谢方法主要有：肝微粒体体外温孵法、重组P450酶体外温孵法、肝细胞体外温孵法、肝脏离体灌流法和肝切片法。其中，肝微粒体体外温孵法与其他体外代谢方法相比，酶制备简单，代谢过程快，重现性好，易大量操作，同时可用于药物代谢酶的抑制及体外清除等方面的研究，因而在实际工作中应用较为普遍。 1.2 CYP450酶代谢表型研究的意义为获得更好的治疗效果，联合用药在临床治疗中已非常普遍。然而，在获得更好的疗效的同时，常伴随着由药物-药物相互作用（drug-drug interaction，DDI）引起的不良反应事件的发生。如特非那丁与酮康唑合用时，酮康唑可显著地抑制特非那丁的代谢，造成特非那丁的血药浓度显著升高，可以导致致命的室间心律失常。因此，在新药临床前研究中，对药物的代谢酶表型进行鉴定，获得其主要代谢酶的消除比例，阐明参与药物体内代谢转化的相关酶亚型，对于研究药物的代谢机制，预测药物代谢多态性和药物间相互作用等方面具有重要意义。药物代谢酶表型鉴定，主要是研究参与药物清除的代谢酶的类型、数量和相对贡献率。如果药物主要通过单一的代谢途径对药物进行清除，可能会存在很大的用药风险；相反，如果某一药物的代谢过程涉及的代谢酶越多，则说明其代谢途径也越多，也就难以发生潜在的药物-药物相互作用，使得患者之间的治疗偏差降低。汇智泰康/汇智和源针对CYP450酶代谢表型研究的需要，以肝微粒体体外温孵法为指导，以化学抑制法为基础，开发了一款专门用于CYP450酶代谢表型研究的试剂盒，该产品可直接用于药物CYP450酶代谢表型研究，省去了肝微粒体制备和试剂配制的繁琐过程，大大缩短了实验周期，且试剂盒各组成成分经过严格的质量检测，符合CYP450酶代谢表型研究试验要求，实验结果准确、可靠、重现性好。图1为采用肝微粒体技术研究西尼地平与几种临床常用药物间的代谢相互作用的实例，结果表明环孢素、红霉素和辛伐他丁在体外表现出对西尼地平代谢的抑制作用，由于三者均是CYP3A的抑制剂或底物，这提示西尼地平与CYP3A的抑制剂或底物合用时可能会出现代谢上的相互作用，使西尼地平的代谢速率降低，西尼地平二氢吡啶环脱氢代谢物生成减少，而原型药物的水平显著提高，这可能会影响临床疗效的正常发挥。图1 人肝微粒体中几种临床常用药物对西尼地平代谢的影响如果合用的药物具有潜在的抑制或诱导代谢酶的能力，则前者将受到合用药物的影响，从而使其代谢清除途径发生量化的改变，这种药物相互作用可能会影响治疗效果，增加药物的治疗失败率，甚至诱发不良反应。因此，通过对代谢酶表型的体外研究来判定该化合物的主要代谢酶亚型，已成为药物临床前代谢研究工作中必不可少的一部分。 1.3 CYP450酶及代谢表型研究方法 CYP450为一类含亚铁血红素蛋白的超家族，根据相关酶亚型在药物代谢中的重要程度，可将CYP450分为以下三类：（1）主要CYP450，包括CYP1A2、CYP2C9 、CYP2C19 、CYP2D6 和CYP3A4；（2）较主要CYP450，包括CYP2B6、CYP2C8和CYP3A5；（3）次要CYP450，包括CYP1A1、CYP1B1、CYP2A6、CYP2E1、CYP2J2和CYP4A11等。参与药物代谢的动物肝微粒体P450酶较为复杂，而人肝微粒体中参与药物代谢的P450酶相对比较简单，主要有CYP1A、CYP2C、CYP2D、CYP2E和CYP3A，其组成见图2。图2 人肝内P450酶的组成目前，CYP450的酶表型鉴定主要使用以下3种方法：选择性抑制法、重组人源CYP450同工酶法、相关性分析法。选择性抑制法又分为化学抑制法和抗体抑制法，即在加入和不加入一系类CYP450酶亚型选择性化学抑制剂或抗体的条件下，分别测定人肝微粒体对药物的代谢活性，以考察人肝微粒体中CYP450酶亚型倍选择性抑制后，药物的代谢是否受到影响，从而计算相对抑制百分率，推断CYP450酶代谢表型。其中，化学抑制法由于其操作简单，且价格低廉而得到广泛应用。 2 实验原理参与药物代谢的CYP450酶主要为CYP1、CYP2和CYP3三个家族，共有7种重要的亚型，分别为CYP1A2、CYP2A6、CYP2C9、CYP2C19、CYP2D6、CYP2E1和CYP3A4； α-奈黄酮为CYP1A2的特异的选择性抑制剂，毛果芸香碱为CYP2A6的特异的选择性抑制剂，噻氯匹定为CYP2C19的特异的选择性抑制剂，奎尼丁为CYP2D6的特异的选择性抑制剂，二乙基二硫代氨基甲酸钠为CYP2E1的特异的选择性抑制剂，酮康唑为CYP3A4的特异的选择性抑制剂，磺胺苯吡唑为CYP2C9的特异的选择性抑制剂，如选用特异的选择性抑制剂抑制不同亚型的酶的活性，便可研究药物的CYP450酶代谢表型。 3 实验方法描述肝微粒体体外温孵法是采用肝微粒体，辅以NADPH再生系统（IPHASE汇智和源），在体外模拟生理环境条件进行代谢反应，经过一定时间的反应后，采用HPLC、HPLC-MC和HPLC-MC/MC测定温孵液中原型药物和其代谢产物，并对代谢产物进行初步的分析和鉴定的方法。 3.1 肝微粒体制备 P450酶主要在肝脏中表达，肝脏中的P450酶在体外是以微粒体的形式存在的。微粒体是指在细胞匀浆和差速离心过程中获得的由破碎的内质网自我融合形成的近似球形的膜囊泡状结构，是异质性的集合体。它包含内质网膜和核糖体两种基本成分，在体外实验中具有蛋白质合成、蛋白质糖基化和脂类合成等内质网的基本功能。目前，制备肝微粒体常用的方法是差速离心法。具体制备流程见下图（图3）：图3 肝微粒体制备流程图 3.2 体外孵育体系的建立 CYP450酶代谢表型研究的肝微粒体体外孵育体系，是由制备的肝微粒体辅以氧化还原型辅酶，再加入酶特异的选择性抑制剂，在模拟生理温度及生理环境的条件下进行生化反应的体系。推荐使用的孵育体系为：每个孵育体系总体积为200 µL，体系包括0.1M PH 7.4 的磷酸缓冲液，汇智和源NADPH再生系统（1mM NADP，5 mM的6-磷酸葡萄糖，1 U/mL 6-磷酸葡萄糖脱氢酶，3.3 mM的氯化镁）；0.5 mg/mL的肝微粒体蛋白；适量的选择性抑制剂；合适浓度的待测物，于37°C水浴孵育，每个样品平行3次，以不加选择性抑制剂组为对照。于预设的反应时间点，加入等体积预冷的乙腈终止反应。 3.3 原型药物或代谢产物的检测采用HPLC、HPLC-MC和HPLC-MC/MC测定温孵液中原型药物或其代谢产物的浓度。例：下图（图4、图5、图6）为研究某一候选药物的CYP450酶代谢表型的实验，该实验采用选择性化学抑制剂的方法分析了该药物在鼠、犬和人肝微粒体中的代谢情况，从而判断微粒体中哪些CYP450亚型是该药物的主要代谢酶。数据计算：用待测物的消除速率表示待测物在微粒体孵育体系中的代谢速率。抑制率%=（1- 加入抑制剂样品代谢速率/空白对照样品代谢速率）×100% 图4 大鼠肝微粒中某药物的代谢抑制率图5 犬肝微粒中某药物的代谢抑制率图6 人肝微粒中某药物的代谢抑制率从上图可知，不同种属微粒体中，该候选药物的代谢抑制率存在差异。表明，不同种属微粒体中参与该候选药物代谢的酶亚型可能不同。 4 CYP450酶代谢表型研究试剂盒简介汇智泰康/汇智和源针对CYP450酶代谢表型研究的需要，以肝微粒体体外温孵法为指导，以化学抑制法为基础，开发了一款专门用于CYP450酶代谢表型研究的试剂盒，该产品可直接用于药物CYP450酶代谢表型研究，省去了肝微粒体制备和试剂配制的繁琐过程，大大缩短了实验周期，且试剂盒各组成成分经过严格的质量检测，符合CYP450酶代谢表型研究试验要求，实验结果准确、可靠、重现性好。 4.1 产品说明本产品提供了CYP450酶代谢表型研究用到的肝微粒体、NADPH再生系统、酶特异性抑制剂及其它组分，可直接用于药物CYP450酶代谢表型研究。本产品可提供肝微粒体有：人肝微粒体、恒河猴肝微粒体、比格犬肝微粒体、大鼠肝微粒体和小鼠肝微粒体，可根据实际需求，选择不同种属的肝微粒体。 4.2 试剂盒优势便捷——本试剂盒省去了肝微粒体制备和试剂配制时间，可以直接使用，大大缩短了实验周期。准确——本试剂盒各成分均经过严格的质量检测，实验结果准确、可靠、重现性高。稳定—— 本试剂盒稳定性强、易于运输和保存。 4.3 产品组成 50反应/盒，200μL/反应。产品名称规格数量 A液（20×） 600μL /支 1支 B液（100×） 120μL /支 1支肝微粒体（20mg/mL） 300μL/支 1支阳性底物（200×） 50μL/支 1支选择性抑制剂 60μL /支 7支 0.1M PBS缓冲液 10mL/瓶 1瓶 4.4 产品使用说明本产品需于-70℃冰箱冷冻保存，切记避免反复冻融。试验具体操作如下： 4.4.1 试验组 1）冰浴融化试剂盒各组分，置于冰上待用； 2）除微粒体外，将孵育体系其它各组分按照配比混合并吹吸混匀，于37℃预孵育5min；例：200μL孵育体系配制：名称加入量（μL） A液(20×) 10 B液(100×) 2 肝微粒体（20mg/mL） 5 选择性抑制剂 1 受试物（200×） 1 0.1M PBS缓冲液 181 注：a.体系中有机溶剂加入量不得大于1%。 b.若实际需要n个孵育体系，则需配置n＋1个体系。 3）将以上混合液195μL/管分装至1.5mL离心管中，于37℃水浴中保温， 5μL/反应加入肝微粒体，吹吸3次混匀于37℃水浴条件下启动代谢反应，使用秒表计时； 4）于设定孵育时间点，向孵育体系中加入200μL预冷的乙腈终止反应（预冷乙腈：孵育体系体积=1:1）。 4.4.2 对照组 1）加阳性底物组：反应体系中不加选择性抑制剂，并将受试物换为阳性底物，其它组分加入量不变，缺少体积用0.1M PBS缓冲液补齐； 2）无抑制剂组：反应体系中不加选择性抑制剂，其它组分加入量不变，缺少体积用0.1M PBS缓冲液补齐； 3）无A液、B液组：反应体系中不加A液和B液，其它组分加入量不变，缺少体积用0.1M PBS缓冲液补齐。 4.4.3 结果判定 CYP450酶亚型与选择性抑制剂对应一览表。 CYP450酶亚型选择性抑制剂 CYP1A2 α-奈黄酮 CYP2A6 毛果芸香碱 CYP2C19 噻氯匹定 CYP2D6 奎尼丁 CYP2E1 二乙基二硫代氨基甲酸钠 CYP3A4 酮康唑 CYP2C9 磺胺苯吡唑 4.5 运输条件干冰运输。 4.6 注意事项 1.试验开始前，请自行准备1.5mL离心管、不同规格枪头、乙腈、37℃水浴锅等。 2.本产品仅供科研使用，不能用于人体及动物的治疗或临床诊断。 3.使用前，需于冰浴条件下解冻并混合均匀。 4.于-70℃冰箱冷冻保存，切勿反复冻融。 5.在使用过程中，也可根据实际实验需求调整各组分的加入量。

体外哺乳类细胞微核试验原理及注意事项 2021-10-15

微核试验是遗传毒性研究标准组合试验之一，在食品，化学品，药品，农药，饮用水等多类产品的遗传毒性评价方面得到广泛应用。与体内实验相比，体外微核试验更加简单快速，避免动物个体差异影响，灵敏度高。体外微核试验主要包括体外哺乳类细胞微核试验，人外周血淋巴细胞微核试验，肝原代细胞微核试验等类别。体外哺乳类细胞微核试验是一种用于检测哺乳类细胞在受试物处理后是否产生微核的遗传毒性检测方法。该试验适用于检测有丝分裂细胞暴露于受试物期间或之后致染色体断裂和诱发非整倍体的能力。如果 3 h～6 h 短期处理的试验结果为阴性或不确定时，需要进行无代谢活化系统的长期处理试验，相当于用受试物处理细胞 1.5 个～2.0 个正常细胞周期。参考导则： GB 15193.28 - 2020 食品安全国家标准体外哺乳类细胞微核试验一、仪器、试剂 1.1 仪器细胞培养箱、倒置显微镜、正置显微镜、超净台、离心机。 1.2 代谢活化系统 1.2.1 S9 辅助因子的配制 1.2.1.1 镁钾溶液氯化镁 1.9 g 和氯化钾 6.15 g 加蒸馏水溶解至 100 ml。 1.2.1.2 0.2 mol/L 磷酸盐缓冲液 (pH 7.4) 磷酸氢二钠 (Na2 HPO4，28.4 g/L)440 mL, 磷酸二氢钠 (NaH2PO4·H2O,27.6 g/L)60 mL，调 pH 至 7.4，0.103 MPa 20 min 灭菌或滤菌。 1.2.1.3 辅酶-Ⅱ(氧化型) 溶液无菌条件下称取辅酶-Ⅱ，用无菌蒸馏水溶解配制成 0.025mol/L 溶液，现用现配。 1.2.1.4 葡萄糖- 6 -磷酸钠盐溶液称取葡萄糖- 6 磷酸钠盐, 用蒸馏水溶解配制成 0.05 mol/L 溶液，过滤灭菌。现用现配。 1.2.2 大鼠肝 S9 组分的诱导和配制选健康雄性成年 SD 或 Wistar 大鼠，体重 150 g～200 g，约 5 周龄～6 周龄。将多氯-联-苯 (Aroclor 1254) 溶于玉米油中，浓度为 200 g/L，按 500 mg/kg 体重无菌操作一次腹腔注射，5 d 后处死动物，处死前禁食 12 h。也可采用苯巴比-妥-钠和β-萘黄酮联合诱导的方法进行制备，经口灌胃给予大鼠苯巴比-妥-钠和β-萘黄酮，剂量均为 80 mg/kg 体重，连续 3d，禁食 16 h 后断头处死动物。其他操作同多氯联苯诱导。 S9 组分制成后，经无菌检查，测定蛋白含量 (Lowry 法)，每毫升蛋白含量不超过 40 mg 为宜，并经间接致突变剂鉴定其生物活性合格后贮存于- 80°C 低温或冰冻干燥，保存期不超过 1 年。 1.2.3 S9 混合液的制备 S9 混合液浓度一般为 1%～10%，实际使用浓度可由各实验室决定，但需对其活性进行鉴定，必须能明显活化阳性对照物，且对细胞无明显毒性。一般由 S9 组分和辅助因子按 1:9 组成 10% 的 S9 混合液，无菌现用现配。10%S9 混合液 10 mL 配制方法如下: 取上述磷酸盐缓冲液 6.0 mL、镁钾溶液 0.4 mL、葡萄糖- 6 -磷酸钠盐溶液 1.0 mL、辅酶 II 溶液 1.6 mL、肝 S9 组分 1.0 mL，混匀，置冰浴中待用。 1.3 肌动蛋白聚合抑制剂细胞松弛素 B(CytochalasinB，cytoB) 溶液用二甲基亚砜 ( DMSO) 配制适当浓度的储备液，避光冷藏保存。cytoB 的终浓度通常为 3 μg/ mL ～6 μg/mL，实验室应根据各种细胞系选择 cytoB 的适当终浓度，以达到理想的双核细胞出现频率。 1.4 0.075 mol/L 氯化钾溶液 5.59 g 氯化钾加蒸馏水至 1000 ml。 1.5 固定液甲醇: 冰醋酸为 3:1，临用前配制。 1.6 姬姆萨 (Giemsa) 染液取姬姆萨染料 3.8 g ，置乳钵中，加少量甲醇研磨。逐渐加甲醇至 375 mL，待完全溶解后，再加 125 mL 甘油，放入 37° C 温箱中保温 48 h。保温期间振摇数次，使充分溶解。取出过滤，2 周后使用，作为姬姆萨染液原液。使用时, 取 1 份姬姆萨染液原液，与 9 份 1 / 15 mol/L 磷酸盐缓冲液 (pH 6.8) 混合, 配成其应用液. 现配现用。磷酸盐缓冲液 (1 / 15 mol/L，pH 6.8) 配制方法如下： a) 第一液：取磷酸氢二钠 (Na2 HPO4)9.47 g 溶于 1000 mL 去离子水中，配成 1 / 15 mol/L 溶液； b) 第二液：取磷酸二氢钾 (KH2 PO4 )9.07 g 溶于 1 000 mL 去离子水中，配成 1 / 15 mol/L 溶液； c) 取第一液 50 mL 加于第二液 50 ml 中混匀，即为 pH 6.8 的 1 / 15 mol/L 磷酸盐缓冲液。二、试验方法 2.1 受试物固体受试物应溶解于适合的溶媒中，并稀释至适当浓度。液体受试物可直接使用或稀释至适当浓度使用。受试物应无菌现用现配，否则须确认储存不影响其稳定性。 2.2 细胞可选用中国仓鼠肺细胞株 (V79、CHL) 或卵巢细胞株 (CHO)、小鼠淋巴瘤细胞株 (L5178Y)、人外周血淋巴细胞株 (如 TK6) 和原代培养细胞。推荐使用 CHL 或 L5178Y 细胞株。细胞在使用前应进行染色体数目稳定性和有无支原体污染的检查。汇智泰康体外微核试验试剂盒推荐使用中国仓鼠肺细胞株（CHL）。 2.3 试验方案选择试验分为使用和不使用 cytoB 两种方案。方案一：在细胞经过受试物处理，有丝分裂前使用 cytoB，然后观察分析已完成一次有丝分裂的细胞 (双核细胞) 微核率。当选用人类淋巴细胞时, 建议采用方案一，因为不同来源的细胞周期不同，而且不是所有的细胞都对植物血球凝集素 (PHA) 有反应。方案二：不使用 cytoB，细胞经过受试物处理后观察分析细胞微核率。如果有证据表明受试物干扰 cytoB 的活性，或 cytoB 可能影响细胞的生长 (如小鼠淋巴瘤细胞株)，建议采用方案二。 2.4 剂量 2.4.1 剂量设置至少应设置 3 个检测剂量。受试物没有细胞毒性时，从最高剂量往下设至少 2 个剂量，一般情况下间隔系数可为 2～3；有细胞毒性时，其剂量范围应涵盖从 55% 士 5% 的细胞毒性到几乎无细胞毒性。 2.4.2 最高剂量的选择决定最高剂量的因素是细胞毒性、受试物的溶解度以及 pH、渗透压。受试物有细胞毒性时，最高剂量应能引起 55% 士 5% 的细胞毒性；如果没有细胞毒性或沉淀，最高剂量应是 5 μL/mL、5 mg/ml 或 10 mmol/L。对溶解度较低的物质. 当达到最大溶解浓度时仍无毒性，则最高剂量应是在最终培养液中溶解度限值以上的一个浓度。在某些情况下，应使用一个以上可见沉淀的浓度，溶解性可用肉眼鉴别，但沉淀不能影响观察。 2.4.3 细胞毒性的确定，在 S9 存在和不存在两种条件下依据细胞完整性和生长情况的指标来确定细胞毒性。 2.4.4 阳性对照阳性对照物包括染色体断裂剂和非整倍体剂。加 S9 时，断裂剂可以选用环磷酰胺和苯并 (a) 芘；不加 S9 时，断裂剂可以选用阿糖胞苷、丝裂霉素 C、甲磺酸甲酯和 4 -硝基喹啉；非整倍体剂只用于不加 S9 时，可以选用秋水仙素和长春新碱。如果短期处理试验方案在 S9 存在和不存在两种条件下都选用断裂剂作为阳性对照，那么长期处理试验方案应该选用非整倍体剂作为阳性对照。如果选用的细胞本身具有代谢能力，则不需要另外添加 S9，阳性对照应该同时使用断裂剂和非整倍体剂。 2.4.5 阴性对照溶媒必须是非致突变物，不与受试物发生化学反应，不影响组胞存活和 S9 活性。首选溶媒是培养液 (不含血清) 或水。使用水作为溶媒时其体积不应大于总体积的 10%。DMSO 也是常用溶媒，但终浓度不应大于 1%。 2.4.6 空白对照如果没有文献资料或历史资料证实所用溶媒无致突变作用时应设空白对照。 2.5 试验步骤 2.5.1 细胞准备将一定数量的细胞接种于培养皿 (瓶) 中，以收获细胞时，培养皿 (瓶) 的细胞未长满为标准，贴壁细胞一般以长到 85% 左右为佳。 2.5.2 受试物处理 2.5.2.1 应用方案一，吸去培养液，用磷酸盐缓冲液洗细胞，加入无血清培养液及一定浓度的受试物 (需代谢活化者同时加人 S9 mix)，置于培养箱中 3 h～6 h；结束后吸去含受试物的培养液，用 PBS 洗细胞，加人含 10% 血清的新鲜培养液和 cytoB，继续培养 1.5 个～2.0 个正常细胞周期后收集细胞。对于淋巴细胞，最有效的方法是在有丝分裂原 (如 PHA) 刺激后 44 h～48 h 开始受试物处理，这时细胞开始进入分裂周期。如果 3 h～6 h 短期处理的试验结果为阴性或不明确时，需要进行无 S9 的长期处理试验，用 cytoB 和受试物处理细胞 1.5 个～2.0 个正常细胞周期，在处理结束后收集细胞。如果已知或怀疑受试物 (如核苷类物质) 可能影响细胞周期 (特别是 P53 活性细胞)，则细胞收获时间应该再延长 1.5 个～2.0 个正常细胞周期。 2.5.2.2 应用方案二，与 2.5.2.1 处理方法相同，只是不加 cytoB。 2.5.3 收获细胞与制片每次培养都应单独收获细胞和制片，如果细胞混合液的分散度良好则不需要进行低渗处理。 2.5.3.1 消化贴壁细胞用 0.25% 胰蛋白酶溶液消化，待细胞脱落后，加入含 10% 胎牛或小牛血清的培养液终止胰蛋白酶的作用，混匀，放人离心管以 800r/min～1 000r/min 的速度离心 5 min，弃去上清液。悬浮细胞不需要消化，直接离心。. 2.5.3.2 低渗加入 0.075 mol/L 氯化钾溶液 2 mL，用滴管将细胞轻轻地混匀，放人 37°C 细胞培养箱中低渗处理 1 min～5 min. 2.5.3.3 固定加入 2 mL 固定液，混匀后固定 5 min 以上，以 800 r/min～1 000 r/min 的速度离心 5 min，弃去上清液。重复一次，弃去上清液。 2.5.3.4 滴片加人数滴新鲜固定液，混匀。用混悬液滴片，自然干燥。 2.5.3.5 染色推荐用姬姆萨染色 (5% ～10% 姬姆萨染液，15 min～ 20 min),，也可用 DNA 特异性荧光染料 (如: 吖啶橙或 Hoechst 33258)。如果需要区分染色体断裂剂和非整倍体诱变剂，可用荧光原位杂交 (FISH) 或引物原位标记等方法。 2.5.4 阅片 2.5.4.1 微核的判断标准：微核一般为圆形或椭圆形，直径不超过主核的 1 / 3；与主核在一个焦点平面上，与主核的颜色、结构特征及折光性一致；与主核之间没有核物质相连，可以和主核有边界的重叠，但能看清各自的核膜。 2.5.4.2 应用方案一，每个剂量组至少分析 2000 个双核细胞，计算微核细胞率 (一个双核细胞不论含有几个微核，都只算作一个含微核细胞)。如果单次培养可供计数的双核细胞数少于 2000，则应采用多次细胞培养或平行培养。对不规则的双核细胞 (如两个核大小相差悬殊) 和多于两个核的细胞不进行分析。 2.5.4.3 应用方案二，每个剂量组至少分析 2 000 个细胞，计算微核细胞率。如果单次培养可供计数的细胞数少于 2000，则应采用多次细胞培养或平行培养。三、数据处理和结果判定 3.1 数据处理数据按不同剂量列表，指标包括细胞毒性、观察细胞数、含微核细胞数及微核细胞率。受试物各剂量组与空白对照组、阴性对照组 (溶媒对照组)、阳性对照组的微核细胞率用适当的统计学方法 (如 X2 检验) 进行处理。 3.2 结果判定下列两种情况可判定受试物在本试验系统中为阳性结果； a) 受试物引起微核细胞率的增加具有统计学意义，并与剂量相关; b) 受试物在任何一个剂量条件下，引起的微核细胞率增加具有统计学意义，并有可重复性。四、试验解释阳性结果表明受试物在该试验条件下可引起所用哺乳类细胞染色体损伤，微核细胞率增加。阴性结果表明在该试验条件下受试物不引起所用哺乳类细胞染色体损伤。评价时应综合考虑生物学和统计学意义。体外微核试验试剂盒北京汇智泰康针对体外哺乳类细胞微核试验开发体外微核试验试剂盒，本试剂盒提供了进行体外哺乳类细胞微核试验所需的主要试剂和细胞，快速检测受试物是否有导致染色体断裂和诱发非整倍体的情况，从而评价受试物的遗传毒性，试剂盒的使用可以大大节约实验人员的准备时间。【产品使用说明】 1、细胞复苏收到试剂盒后，请尽快复苏细胞。从- 70 冰箱取出细胞，于 37℃ 水浴融化，离心，弃上清，用含 10% 牛血清 RPMI 1640 培养液（RPMI- 10）中重悬细胞后，再次离心；弃上清，用 RPMI- 10 重悬后接种于细胞培养瓶，于 37℃ 二氧化碳培养箱中培养，后期细胞传代比例为 1:3。 2、细胞准备将处于对数生长期，贴壁生长良好的细胞用胰蛋白酶（Trypsin-EDTA）消化处理制成细胞悬液，5 mL/瓶接种于 25 cm2 细胞培养瓶中，于 37℃、5% 二氧化碳培养箱中加湿培养约 24 h- 48 h。 3、染毒处理吸去培养瓶中培养液，加入一定浓度的受试物、S9 混合液（不加 S9 混合液时，需用培养液补足）以及一定量不含血清的培养液，于培养箱中处理 3 h。弃去处理液，使用 PBS 洗涤细胞 2～3 次，换液后，按 1% 的比列加入细胞松弛素 B（如 4.95 mL RPMI- 10 + 0.05 mL cytoB）。具体试验方案见下表： 4、收获细胞及制片用胰蛋白酶溶液消化细胞，加入 0.075mol/L 氯化钾溶液进行低渗处理，固定液（甲醇：冰醋酸 = 3：1，可适当调整冰醋酸浓度，但不宜过大）进行固定并滴片，用吉姆萨染液染色，中性树胶封片，并于油镜下进行阅片，每处理组计数 500 个细胞中的增值指数 CBPI 和细胞复制指数 RI，计算出细胞毒性；每一剂量组应分析不少于 2000 个核型相差不大的双核细胞，计算微核率。【注意事项】实验前请自行准备 RPMI 1640 培养液、牛血清、细胞培养瓶、0.075mol/L 氯化钾溶液、甲醇、冰醋酸、吉姆萨染液、胰蛋白酶、24 孔细胞培养板、灭菌枪头、无菌移液管、二氧化碳培养箱、振荡器、15、50 mL 离心管等，所有耗材需做无菌处理。